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論文摘要蝴蝶蘭黃葉病(yellow leaf)由鐮胞菌(Fusarium spp.)所引起，為目前台灣蘭花產業重要病害之一。

傳統上，多以化學藥劑防治，為了降低對化學農藥的依賴及其對環境 ... 資料載入處理中... 跳到主要內容 臺灣博碩士論文加值系統 ::: 網站導覽| 首頁| 關於本站| 聯絡我們| 國圖首頁| 常見問題| 操作說明 English |FB專頁 |Mobile 免費會員 登入| 註冊 功能切換導覽列 (159.65.137.222)您好！臺灣時間：2022/03/2308:11 字體大小：       ::: 詳目顯示 recordfocus 第1筆/ 共1筆  /1頁 論文基本資料 摘要 外文摘要 目次 參考文獻 電子全文 紙本論文 論文連結 QRCode 本論文永久網址: 複製永久網址Twitter研究生:林佑展論文名稱:利用木黴菌防治蝴蝶蘭黃葉病之研究論文名稱(外文):BiologicalcontrolofPhalaenopsisyellowleafcausedbyFusariumsolaniusingTrichodermavirensstrainR42指導教授:沈再木學位類別:碩士校院名稱:國立嘉義大學系所名稱:農學研究所學門:農業科學學門學類:一般農業學類論文種類:學術論文論文出版年:2010畢業學年度:98語文別:中文論文頁數:73中文關鍵詞:木黴菌、蝴蝶蘭、鐮胞菌外文關鍵詞:Trichoderma、Phalaenopsis、Fusarium相關次數: 被引用:1點閱:2001評分:下載:233書目收藏:0 蝴蝶蘭黃葉病(yellowleaf)由鐮胞菌(Fusariumspp.)所引起，為目前台灣蘭花產業重要病害之一。

傳統上，多以化學藥劑防治，為了降低對化學農藥的依賴及其對環境的危害，故本研究嘗試利用本土性木黴菌(Trichodermaspp.)做為蝴蝶蘭黃葉病生物防治製劑之可行性評估。

在生理特性測試結果顯示：木黴菌菌株8株均具有分泌幾丁質分解酵素與纖維分解酵素之能力，且菌絲生長速度皆比鐮胞菌FusariumsolaniFST1快，但孢子發芽時間比F.solaniFST1長。

利用對峙試驗與玻璃紙抗生試驗篩選出4株對F.solaniFST1具有拮抗性之菌株，於PDB液體培養基分別培養1、3、5、7、9、11等日所得之培養濾液測試其對F.solaniFST1孢子發芽率之影響，顯示隨著木黴菌濾液培養日數增加，F.solaniFST1孢子發芽率受抑制的效果愈明顯，以培養7日之培養濾液抑制效果最佳。

木黴菌TrichodermavirensstrainR42培養濾液具有抑制F.solaniFST1菌絲生長的能力，也可抑制F.solaniFST1孢子發芽，在PDA培養基共培養12小時，仍有部分孢子未發芽，但共培養24小時之後，F.solaniFST1孢子皆已發芽生長，顯示應為靜菌效果為主。

在溫室實驗中，接種2-4×105conidia/ml之F.solaniFST1懸浮孢子感染蝴蝶蘭DoritaenopsisLeopardPrince’KHM430’、PhaalaenopsisBrotherGirl’KHM469’與Phal.LuchiaPink‘KHM1078’之罹病度可達96.7%以上，品種間無顯著差異。

木黴菌不同接種時間，以T.virensstrainR42懸浮孢子先接種2日之後，再接種F.solaniFST1之罹病度從100%降至56.7%為最低，顯示木黴菌以預防性施用效果較佳。

以不同濃度2-4×105、2-4×106與2-4×107conidia/ml之T.virensstrainR42懸浮孢子接種Phal.BrotherGirl’KHM469’，罹病度無顯著差異。

T.virensstrainR42懸浮孢子添加2%幾丁質，可提高防治效果。

Phal.SogoYukidian‘V3’以T.virensstrainR42懸浮孢子處理120日，可顯著提高植株地上部鮮重、地下部鮮重、地上部乾重與地下部乾重。

綜合以上結果，顯示本研究所得之木黴菌菌株T.virensstrainR42應具有開發為蝴蝶蘭黃葉病生物防治製劑之潛力。

TheyellowleafdiseaseofPhalaenopsiscausedmainlybyFusariumsolaniwasaseriousthreatoforchidindustryinTaiwan.Forthisdiseasecontrol,chemicalfungicideswereappliedincommonbygrowers.Inordertoreducingtheimpactofchemicalpesticidestoenvironment,thedevelopmentofnontoxicalternatives,suchasantagonistsforcontrolofplantdiseaseswouldbeusefulinreducingnon-desirableenvironmentaleffects.Inthisstudy,consequently,Trichodermaspp.weretriedtoapplyasbiocontrolagentsforcontrollingthediseaseofPhalaenopsis.Firstofall,forphysiologicaltests,theresultsindicatedthat8isolatesofTrichodermaspp.culturedonchitinandcellulosemediaandtoproducetheclearzoneimplyingtheseisolatessecretchitinaseandcellulase.MycelialgrowthoftheisolatesofTrichodermaspp.wasfasterthanthatofF.solani.However,thesporegerminationtimeofF.solaniwasshorterthanthatofTrichodermaspp.Fordualculturetests,4of8isolatesofTrichodermaspp.mightinhibitthemycelialgowthofF.solani,particularly,thefiltratesofT.virensstrainR42thatwasculturedinPotatoDextroseBrothfor7dayssignificantlyinhibitedthesporegerminationandmycelialgrowthofF.solani.Ingreenhousetests,theresultsshowedthatF.solanicouldinfectalltestedcultivarsofPhaloaenopsis.With96.7%ofdiseaseseverity.Thediseasewassuppressedfrom100%to56.7%aftertreatmentofT.virensstrainR42withsprayingconidiasuspensionsfor2dayspriortoinoculationofF.solani.Especially,thepercentageofdiseasesuppressionwasincreasedwhenTrichodermasporesweremixedwith2%chitin.Thefresh-weightofPhal.SogoYukidian‘V3’significantlyincreasedfor120daysaftercultivationatgreenhousewhenPhalaenopsisseedlingsweretreatedwithsporesuspensions(2-4×107conidia/ml)ofT.virensstrainR42.Inconclusion,theresultsshowedthatT.virensstrainR42hadhighpotentialasabiocontrolagentforcontrollingtheyellowleafdiseaseofPhalaenopsisanddevelopingabiofungicide. 中文摘要................................................i英文摘要................................................iii目錄....................................................vi表次....................................................ix圖次....................................................x壹、前言................................................1貳、前人研究.............................................3一、蝴蝶蘭簡介...........................................3二、蝴蝶蘭黃葉病簡介......................................4三、木黴菌簡介...........................................51.抗生(antibiotisis)...................................62.競爭(competition)....................................63.超寄生(mycoparasitism)...............................64.細胞壁分解酵素(cellwalldegradingenzymes,CWDEs)....65.誘導植物產生抗性(induceresistance)...................7參、材料與方法...........................................8一、試驗材料來源.........................................8(一)供試菌株來源........................................8(二)供試植物來源........................................8二、培養基製備...........................................8(一)馬鈴薯葡萄糖瓊脂培養基(PotatoDetroseAgar,PDA).....9(二)減糖PDA斜面.........................................9(三)水瓊脂培養基(WaterAgar,WA)........................9(四)纖維分解酵素檢測培養基...............................9(五)幾丁質分解酵素檢測培養基..............................10(六)馬鈴薯葡萄糖液體培養基(PotatoDetroseBroth,PDB)....10三、木黴菌菌株篩選........................................10(一)菌種培養............................................10(二)孢子懸浮液製備......................................11(三)木黴菌培養濾液製備...................................11(四)供試菌株生長速率檢測.................................12(五)纖維分解酵素檢測.....................................12(六)幾丁質分解酵素檢測...................................12(七)木黴菌與鐮胞菌對峙培養試驗............................12(八)玻璃紙抗生測定......................................13(九)供試菌株孢子發芽率測定...............................13(十)不同培養日數木黴菌培養濾液對鐮胞菌孢子發芽之影響.........13(十一)培養7日之木黴菌培養濾液對鐮胞菌抗生效果之影響.........14(十二)不同含量木黴菌培養濾液在PDA培養基對鐮胞菌菌絲生長之影響.14(十三)不同pH值對木黴菌菌絲生長之影響......................14四、木黴菌懸浮孢子對防治蝴蝶蘭黃葉病之影響...................15(一)不同傷口數對蝴蝶蘭黃葉病病害之影響.....................151.圓形排列5孔傷口.......................................152.直線排列3孔傷口.......................................163.纏繞棉花無傷口........................................16(二)不同品種蝴蝶蘭對鐮胞菌抗病性測定.......................16(三)木黴菌不同使用時間對防治蝴蝶蘭黃葉病之影響..............17(四)幾丁質配合木黴菌對防治蝴蝶蘭黃葉病之影響................17(五)不同木黴菌孢子濃度對防治蝴蝶蘭黃葉病之影響..............17五、木黴菌對蝴蝶蘭植株生育之影響...........................18六、試驗設計及統計分析....................................18肆、結果................................................19一、菌種培養.............................................19(一)供試菌株在PDA培養基之生長情形.........................19(二)纖維分解酵素檢測.....................................19(三)幾丁質分解酵素檢測...................................20(四)木黴菌與鐮胞菌對峙培養試驗............................20(五)玻璃紙抗生測定......................................20(六)供試菌株孢子發芽率測定...............................21(七)不同培養日數木黴菌培養濾液對鐮胞菌孢子發芽率之影響.......22(八)震盪培養7日之木黴菌濾液抑制鐮胞菌菌絲生長之情形.........22(九)木黴菌培養濾液含量對鐮胞菌菌絲生長之影響................23(十)不同pH值對木黴菌菌絲生長之影響........................23二、木黴菌懸浮孢子對防治蝴蝶蘭黃葉病之影響...................23(一)不同傷口數對蝴蝶蘭黃葉病病害之影響.....................231.圓形排列5孔傷口.......................................232.直線排列3孔傷口.......................................243.纏繞棉花無傷口........................................24(二)不同蝴蝶蘭品種對鐮胞菌抗病性測定.......................25(三)木黴菌不同使用時間對防治蝴蝶蘭黃葉病之影響..............25(四)幾丁質配合木黴菌對防治蝴蝶蘭黃葉病之影響................25(五)不同木黴菌孢子濃度對防治蝴蝶蘭黃葉病之影響..............26三、木黴菌對蝴蝶蘭植株生育之影響...........................26伍、討論................................................58陸、參考文獻.............................................64附錄....................................................71 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